-
1Academic Journal
Συγγραφείς: О. A. Orlovskaya, I. N. Leonova, L. A. Solovey, N. I. Dubovets, О. А. Орловская, И. Н. Леонова, Л. А. Соловей, Н. И. Дубовец
Συνεισφορές: Cytological analysis was done with financial support of the Belarusian Republican Foundation for Fundamental Research (project B18R-028). Analysis of introgression lines with SSR and SNP markers was supported by budgetary project FWNR-2022-0017 of the Federal Research Center “Institute of Cytology and Genetics SB RAS”
Πηγή: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 27, № 6 (2023); 553-564 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 27, № 6 (2023); 553-564 ; 2500-3259 ; 10.18699/VJGB-23-65
Θεματικοί όροι: цитологическая стабильность, Triticum aestivum, T. dicoccoides, T. dicoccum, introgression lines, C-banding, SSR analysis, SNP analysis, microsporogenesis, cytological stability, интрогрессивные линии, C-бэндинг, SSR-анализ, SNP-анализ, микроспорогенез
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/3926/1741; Adonina I.G., Shcherban A.B., Zorina M.V., Mehdiyeva S.P., Timonova E.M., Salina E.A. Genetic features of triticale-wheat hybrids with vaviloid-type spike branching. Plants. 2022;11(1):58. DOI:10.3390/plants11010058.; Akhunov E.D., Akhunova A.R., Anderson O.D., Anderson J.A., Blake N., Clegg M.T., Coleman-Derr D., Conley E.J., Crossman C.C., Deal K.R., Dubcovsky J., Gill B.S., Gu Y.Q., Hadam J., Heo H., Huo N., Lazo G.R., Luo M.C., Ma Y.Q., Matthews D.E., McGuire P.E., Morrell P.L., Qualset C.O., Renfro J., Tabanao D., Talbert L.E., Tian C., Toleno D.M., Warburton M.L., You F.M., Zhang W., Dvorak J. Nucleotide diversity maps reveal variation in diversity among wheat genomes and chromosomes. BMC Genomics. 2010;11:702. DOI:10.1186/1471-2164-11-702.; Akpinar B.A., Yuce M., Lucas S., Vrána J., Burešová V., Doležel J., Budak H. Molecular organization and comparative analysis of chromosome 5B of the wild wheat ancestor Triticum dicoccoides. Sci. Rep. 2015;5:10763. DOI:10.1038/srep10763.; Badaeva E.D., Sozinova L.F., Badaev N.S., Muravenko O.V., Zelenin A.V. “Chromosomal passport” of Triticum aestivum L. em Thell. cv. Chinese Spring and standartization of chromosomal analysis of cereals. Cereal Res. Commun. 1990;18(4):273-281.; Badaeva E.D., Badaev N.S., Gill B.S., Filatenko A.A. Intraspecific karyotype divergence in Triticum araraticum (Poaceae). Plant Syst. Evol. 1994;192:117-145. DOI:10.1007/BF00985912.; Badaeva E.D., Dedkova O.S., Gay G., Pukhalskyi V.A., Zelenin A.V., Bernard S., Bernard M. Chromosomal rearrangements in wheat: their types and distribution. Genome. 2007;50(10):907-926. DOI:10.1139/g07-072.; Bariah I., Keidar-Friedman D., Kashkush K. Identification and characterization of large-scale genomic rearrangements during wheat evolution. PLoS One. 2020;15(4):e0231323. DOI:10.1371/journal.pone.0231323.; Bhullar R., Nagarajan R., Bennypaul H., Sidhu G.K., Sidhu G., Rus tgi S., von Wettstein D., Gill K.S. Silencing of a metaphase I-specific gene results in a phenotype similar to that of the Pairing homeologous 1 (Ph1) gene mutations. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2014; 111(39):14187-14192. DOI:10.1073/pnas.1416241111.; Budak H., Kantar M., Kurtoglu K.Y. Drought tolerance in modern and wild wheat. Sci. World J. 2013;2013:548246. DOI:10.1155/2013/548246.; Cakmak I., Torun A., Millet E., Feldman M., Fahima T., Korol A., Nevo E., Braun H.I., Özkan H. Triticum dicoccoides: an important genetic resource for increasing zinc and iron concentration in modern cultivated wheat. Soil Sci. Plant Nutr. 2004;50(7):1047-1054. DOI:10.1080/00380768.2004.10408573.; Сhapman V., Riley R. Homoeologous meiotic chromosome pairing in Triticum aestivum in which chromosome 5B is replaced by an alien homoeologue. Nature. 1970;226(5243):376-377. DOI:10.1038/226376a0.; Dedkova O.S., Badaeva E.D., Mitrofanova O.P., Bilinskaya E.N., Pukhalskiy V.A. Analysis of intraspecific diversity of cultivated emmer Triticum dicoccum (Schrank) Schuebl. using C-banding technique. Russ. J. Genet. 2007;43(11):1271-1285. DOI:10.1134/S1022795407110105.; Dedkova O.S., Badaeva E.D., Amosova A.V., Martynov S.P., Ruanet V.V., Mitrofanova O.P., Pukhal’skiy V.A. Diversity and the origin of the European population of Triticum dicoccum (Schrank) Schuebl. as revealed by chromosome analysis. Russ. J. Genet. 2009; 45(9):1082-1091. DOI:10.1134/S1022795409090099.; Dvorak J., Terlizzi P., Zhang H.B., Resta P. The evolution of poly ploidy wheats: identification of the A genome donor species. Genome. 1993;36(1):21-31. DOI:10.1139/g93-004.; Eilam T., Anikster Y., Millet E., Manisterski J., Feldman M. Nuclear DNA amount and genome downsizing in natural and synthetic allopolyploids of the genera Aegilops and Triticum. Genome. 2008; 51(8):616-627. DOI:10.1139/G08-043.; El-Rawy M.A., Hassan M.I. Assessment of genetic diversity in durum and bread wheat genotypes based on drought tolerance and SSR markers. Plant Breed. Biotech. 2021;9(2):89-103. DOI:10.9787/PBB.2021.9.2.89.; Feldman M., Levy A. Genome evolution due to allopolyploidization in wheat. Genetics. 2012;192(3):763-774. DOI:10.1534/genetics.112.146316.; García C., Guichoux E., Hampe A. A comparative analysis between SNPs and SSRs to investigate genetic variation in a juniper species (Juniperus phoenicea ssp. turbinata). Tree Genet. Genomes. 2018; 14:87. DOI:10.1007/s11295-018-1301-x.; Gong F., Qi T., Zhang T., Lu Y., Liu J., Zhong X., He J., Li Y., Zheng Y., Liu D., Huang L., Wu B. Comparison of the agronomic, cytological, grain protein characteristics, as well as transcriptomic profile of two wheat lines derived from wild emmer. Front. Genet. 2022;12: 804481. DOI:10.3389/fgene.2021.804481.; Gordeeva E.I., Leonova I.N., Kalinina N.P., Salina E.A., Budashkina E.B. Comparative cytological and molecular analysis of common wheat introgression lines containing genetic material of Triticum timopheevii Zhuk. Russ. J. Genet. 2009;45(12):1428-1437. DOI:10.1134/S1022795409120047.; International Wheat Genome Sequencing Consortium (IWGSC). A chromosome-based draft sequence of the hexaploid bread wheat (Triticum aestivum) genome. Science. 2014;345(6194):1251788. DOI:10.1126/science.1251788.; Jaradat A.A. Wheat landraces: a mini review. Emir. J. Food Agric. 2013;25(1):20-29. DOI:10.9755/ejfa.v25i1.15376.; Jlassi I., Bnejdi F., Saadoun M., Hajji A., Mansouri D., Ben-Attia M., El-Gazzah M., El-Bok S. SSR markers and seed quality traits revealed genetic diversity in durum wheat (Triticum durum Desf.). Mol. Biol. Rep. 2021;48(4):3185-3193. DOI:10.1007/s11033-02106385-y.; Jorgensen C., Luo M.-C., Ramasamy R., Dawson M., Gill B.S., Korol A.B., Distelfeld A., Dvorak J. A high-density genetic map of wild emmer wheat from the Karaca Dağ region provides new evidence on the structure and evolution of wheat chromosomes. Front. Plant Sci. 2017;8:1798. DOI:10.3389/fpls.2017.01798.; Kashkush K., Feldman M., Levy A.A. Gene loss, silencing and activation in a newly synthesized wheat allotetraploid. Genetics. 2002; 160(4):1651-1659. DOI:10.1093/genetics/160.4.1651.; Liu J., Huang L., Wang C., Liu Y., Yan Z., Wang Z., Xiang L., Zhong X., Gong F., Zheng Y., Liu D., Wu B. Genome-wide association study reveals novel genomic regions associated with high grain protein content in wheat lines derived from wild emmer wheat. Front. Plant Sci. 2019;10:464. DOI:10.3389/fpls.2019.00464.; Liu J., Huang L., Li T., Liu Y., Yan Z., Tang G., Zheng Y., Liu D., Wu B. Genome-wide association study for grain micronutrient concentrations in wheat advanced lines derived from wild emmer. Front. Plant Sci. 2021;12:651283. DOI:10.3389/fpls.2021.651283.; Maccaferri M., Ricci A., Salvi S., Milner S.G., Noli E., Martelli P.L., Casadio R., Akhunov E., Scalabrin S., Vendramin V., Ammar K., Blanco A., Desiderio F., Distelfeld A., Dubcovsky J., Fahima T., Faris J., Korol A., Massi A., Mastrangelo M.A., Morgante M., Pozniak C., N’Diaye A., Xu S., Tuberosa R. A high-density, SNP-based consensus map of tetraploid wheat as a bridge to integrate durum and bread wheat genomics and breeding. Plant Biotechnol. J. 2015; 13(5):648-663. DOI:10.1111/pbi.12288.; Mattera M.G., Ávila C.M., Atienza S.G., Cabrera A. Cytological and molecular characterization of wheat-Hordeum chilense chromosome 7Hch introgression lines. Euphytica. 2015;203:165-176. DOI:10.1007/s10681-014-1292-0.; Naranjo T. Finding the correct pathner: the meiotic courtship. Scientfica (Cairo). 2012;2012:509073. DOI:10.6064/2012/509073.; Nevo E., Chen G. Drought and salt tolerances in wild relatives for wheat and barley improvement. Plant Cell Environ. 2010;33(4): 670-685. DOI:10.1111/j.1365-3040.2009.02107.x.; Ohm J.B., Klindworth D.L., Hareland G.A., Faris J.D., Elias E.M., Xu S.S. Variation in kernel characteristics and protein molecular weight distribution of Langdon durum wild emmer wheat chromosome substitution lines. J. Cereal Sci. 2010;52(2):207-214. DOI:10.1016/j.jcs.2010.05.007.; Orlovskaya O.A., Koren L.V., Khotyleva L.V. Cytological characteristic of wheat hybrids produced by remote hybridization of the Triticeae tribe. Izvestiya Natsionalnoy Akademii Nauk Belarusi. Seriya Biologicheskikh Nauk = Proceedings of the National Aca demy of Sciences of Belarus. Biological Series. 2010;4:50-54. (in Russian); Orlovskaya О., Dubovets N., Solovey L., Leonova I. Molecular cytological analysis of alien introgressions in common wheat lines derived from the cross of Triticum aestivum with T. kiharae. BMC Plant Biol. 2020;20(Suppl. 1):201. DOI:10.1186/s12870-020-02407-2.; Ozkan H., Levy A., Feldman M. Allopolyploidy-induced rapid genome evolution in the wheat (Aegilops–Triticum) group. Plant Cell. 2001;13(8):1735-1747. DOI:10.1105/TPC.010082.; Peleg Z., Fahima T., Abbo S., Krugman T., Nevo E., Yakir D., Saranga Y. Genetic diversity for drought resistance in wild wheat and its ecogeographical association. Plant Cell Environ. 2005;28(2):176191. DOI:10.1111/j.1365-3040.2005.01259.x.; Peng J.H., Fahima T., Röder M.S., Huang Q.Y., Dahan A., Li Y.C., Grama A., Nevo E. High-density molecular map of chromosome region harboring stripe-rust resistance genes YrH52 and Yr15 derived from wild emmer wheat, Triticum dicoccoides. Genetica. 2000; 109(3):199-210. DOI:10.1023/a:1017573726512.; Peng J.H., Sun D.H., Nevo D. Domestication evolution, genetics and genomics in wheat. Mol. Breed. 2011;28:281-301. DOI:10.1007/s11032-011-9608-4.; Pestsova E., Ganal M.W., Röder M.S. Isolation and mapping of microsatellite markers specific for the D genome of bread wheat. Genome. 2000;43(4):689-697. DOI:10.1139/gen-43-4-689.; Petersen G., Seberg O., Yde M., Berthelsen K. Phylogenetic relationships of Triticum and Aegilops and evidence for the origin of the A, B, and D genomes of common wheat (Triticum aestivum). Mol. Phylogenet. Evol. 2006;39(1):70-82. DOI:10.1016/j.ympev.2006.01.023.; Pour-Aboughadareh A., Poczai P., Etminan A., Jadidi O., Kianersi F., Shooshtari L. An analysis of genetic variability and population structure in wheat germplasm using microsatellite and gene-based markers. Plants. 2022;11(9):1205. DOI:10.3390/plants11091205.; Riley R., Chapman V. Genetic control of cytologically diploid behavior of hexaploid wheat. Nature. 1958;182:713-715. DOI:10.1038/182713a0.; Röder M.S., Korzun V., Wendehake K., Plaschke J., Tixier M.H., Leroy P., Ganal M.W. A microsatellite map of wheat. Genetics. 1998; 149(4):2007-2023. DOI:10.1093/genetics/149.4.2007.; Salina E.A., Leonova I.N., Efremova T.T., Röder M.S. Wheat genome structure: translocations during the course of polyploidization. Funct. Integr. Genomics. 2006;6(1):71-80. DOI:10.1007/s10142005-0001-4.; Silkova O.G., Dobrovolskaya O.B., Dubovets N.I., Adonina I.G., Kravtsova L.A., Roeder M.S., Salina E.A., Shchapova A.I., Shumny V.K. Production of wheat-rye substitution lines and identification of chromosome composition of karyotypes using C-banding, GISH, and SSR markers. Russ. J. Genet. 2006;42(6):645-653. DOI:10.1134/S1022795406060093.; Singh N., Choudhury D.R., Singh A.K., Kumar S., Srinivasan K., Tyagi R.K., Singh N.K., Singh R. Comparison of SSR and SNP markers in estimation of genetic diversity and population structure of Indian rice varieties. PLoS One. 2013;8(12):e84136. DOI:10.1371/journal.pone.0084136.; Skolotneva E.S., Leonova I.N., Bukatich E.Yu., Salina E.A. Methodical approaches to identification of effective wheat genes pro viding broad-spectrum resistance against fungal diseases. Vavilov skii Zhurnal Genetiki i Selektsii = Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2017;21(7):862-869. DOI:10.18699/VJ17.307. (in Russian); Somers D.J., Isaac P., Edwards K. A high-density microsatellite consensus map for bread wheat (Triticum aestivum L.). Theor. Appl. Genet. 2004;109(6):1105-1114. DOI:10.1007/s00122-004-1740-7.; Sosnikhina S.P., Mikhailova E.I., Tikholiz O.A., Tsvetkova N.V., Lovtsyus A.V., Sapronova O.S., Fedotova Yu.S., Kolomiets O.L., Bogdanov Yu.F. Expression and inheritance of a desynaptic phenotype with impaired homologous synapsis in rye. Russ. J. Genet. 2007; 43(10):1193-1200. DOI:10.1134/S1022795407100146.; Surzhikov S.A., Knüpffer H., Kilian B. Chromosomal rearrangements in wheat: their types and distribution. Genome. 2007;50(10):907926. DOI:10.1139/G07-072.; Tereba A., Konecka A. Comparison of microsatellites and SNP markers in genetic diversity level of two scots pine stands. Environ. Sci. Proc. 2021;3(1):4. DOI:10.3390/IECF2020-07776.; Uauy C., Distelfeld A., Fahima T., Blechl A., Dubcovsky J. A NAC gene regulating senescence improves grain protein, zinc, and iron content in wheat. Science. 2006;314(5803):1298-1301. DOI:10.1126/science.1133649.; Wang S., Wong D., Forrest K., Allen A., Chao S., Huang B.E., Maccaferri M., … Tuberosa R., Lawley C., Mikoulitch I., Cavanagh C., Edwards K.J., Hayden M., Akhunov E. Characterization of polyploid wheat genomic diversity using a high-density 90,000 single nucleotide polymorphism array. Plant Biotechnol. J. 2014;12(6):787-796. DOI:10.1111/pbi.12183.; Wang Z., Huang L., Wu B., Hu J., Jiang Z., Hu J., Qi P., Zheng Y., Liu D. Characterization of an integrated active Glu1Ay allele in common wheat from wild emmer and its potential role in flour improvement. Int. J. Mol. Sci. 2018;19(4):923. DOI:10.3390/ijms19040923.; Xie W., Nevo E. Wild emmer: genetic resources, gene mapping and potential for wheat improvement. Euphytica. 2008;164:603-614. DOI:10.1007/s10681-008-9703-8.; Xue F., Ji W., Wang C., Zhang H., Yang B. High-density mapping and marker development for the powdery mildew resistance gene PmAS846 derived from wild emmer wheat (Triticum turgidum var. dicoccoides). Theor. Appl. Genet. 2012;124(8):1549-1560. DOI:10.1007/s00122-012-1809-7.; Zeng J., Cao W., Hucl P., Yang Y., Xue A., Chi D., Fedak G. Molecular cytogenetic analysis of wheat – Elymus repens introgression lines with resistance to Fusarium head blight. Genome. 2013;56(1):75-82. DOI:10.1139/gen-2012-0130.; Zhang H., Guan H., Li J., Zhu J., Xie C., Zhou Y., Duan X., Yang T., Sun Q., Liu Z. Genetic and comparative genomics mapping reveals that a powdery mildew resistance gene Ml3D232 originating from wild emmer co-segregates with an NBS-LRR analog in common wheat (Triticum aestivum L.). Theor. Appl. Genet. 2010;121(8):16131621. DOI:10.1007/s00122-010-1414-6.; Zhou W., Jiang Y., Zhang W., Xu G., Rong J. Characterization of large chromosome segment introgressions from Triticum turgidum subsp. dicoccoides into bread wheat with simple sequence repeat markers. Crop Sci. 2013;53(4):1555-1565. DOI:10.2135/cropsci2012.05.0287.; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/3926
-
2Academic Journal
Συγγραφείς: T. N. Kuzmina, Т. Н. Кузьмина
Πηγή: South of Russia: ecology, development; Том 17, № 3 (2022); 101-111 ; Юг России: экология, развитие; Том 17, № 3 (2022); 101-111 ; 2413-0958 ; 1992-1098 ; 10.18470/1992-1098-2022-3
Θεματικοί όροι: Jasminum, seasonal dynamics, growth, development, genesis, microsporogenesis, сезонная динамика, рост, развитие, генезис, микроспорогенез
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://ecodag.elpub.ru/ugro/article/view/2583/1294; Голубев В.Н., Волокитин Ю.С. Методические рекомендации по изучению антэкологических особенностей цветковых растений. Функционально‐экологические принципы организации репродуктивной структуры. Ялта, НБС, 1986. 37 с.; MacDonald C.C., McMaho K.W. The Flowers that Bloom in the Spring: RNA Processing and Seasonal Flowering // Cell. 2003. V. 113. N. 6. P. 671‐672. DOI:10.1016/S0092‐8674(03)00426‐4; Bratzel F., Turck F. Molecular memories in the regulation of seasonal flowering: From competence to cessation // Genome Biology. 2015. V. 16. N 1. P. 192‐ 206. DOI:10.1186/s13059‐015‐0770‐6; Мирославов Е.А., Бармичева О.М., Миргородская О.Е. Значение пониженных температур осеннего и зимнего периода для развития растений умеренных широт // Растительные ресурсы. 2010. Т. 46. N. 3. С. 1‐12.; Котеева Н.К., Миргородская О.Е., Булышева М.М., Мирославов Е.А. Формирование пыльцы Ribes nigrum (Grossulariaceae) в связи с периодом пониженных температур // Ботанический журнал. 2015. Т. 100. N 10. С. 1001‐1014. DOI:10.1134/S0006813615100014; Mirgorodskay O.E., Koteeva N.K., Volchanskay A.V., Miroslavov E.A. Pollen development in Rododendron in relation to winter dormancy and bloom time // Protoplasma. 2015. vol. 252. P. 1313‐1323. DOI:10.1007/s00709‐015‐0764‐y; Bertel C., Hacker J., Neuner G. Protective role of ice barriers: how reproductive organs of early flowering and mountain plants escape frost injuries // Plants. 2021. N 10. P. 1031‐1049. DOI:10.3390/plants10051031; Голубева И.В. Деревья и кустарники, цветущие в зимний период на Южном берегу Крыма // Труды Государственного Никитского ботанического сада. 1972. T. 50. C. 71‐93.; Flora of China. URL: http://www.efloras.org/florataxon.aspx?flora_id=2&taxon_id=200017786 (дата обращения: 20.08.2021); Коба В.П., Герасимчук В.Н., Папельбу В.В., Сахно Т.М. Аннотированный каталог дендрологической коллекции Никитского ботанического сада / под. общ. ред. чл.‐корр. РАН Плугатаря Ю.В. Симферополь: ИТ «Ариал», 2018. 304 с.; Губанова Т.Б., Браилко В.А., Палий А.Е. Морозостойкость некоторых вечнозеленых видов семейств Oleaceae и Caprifoliaceae на Южном берегу Крыма // Бюллетень Государственного Никитского ботанического сада. 2017. N 125. С. 103‐108.; Кузьмина Т.Н. Формирование мужской генеративной сферы у Jasminum nudiflorum Lindl. (Oleaceae) // Ученые записки Казанского университета. Серия: Естественные науки. 2018. Т. 160. N 3. С. 436‐444.; Жинкина Н.А., Воронова О.Н. О методике окраски эмбриологических препаратов // Ботанический журнал. 2000. Т. 85. N 6. С. 168‐171.; Vasilyeva V.E., Batygina T.B., Titova G.E. Morpho‐physiological correlation in the development of the reproductive structures of Nelumbo nucifera Gaertn. // Phytomorphology: An International Journal of Plant Morphology. 1987. V. 37. P. 349‐357.; Батыгина Т.Б., Васильева В.Е. Размножение растений. Санкт‐Петербург: Издательство Санкт‐Петербургского университета, 2002. 232 с.; Миргородская О.Е., Мирославов Е.А. Микроспорогенез и развитие клеток тапетума Rhododendron luteum (Ericaceae) // Ботанический журнал. 2012. Т. 97. N 3. C. 356‐365.; Антюфеев В.В., Казимирова Р.Н., Евтушенко А.П. Агроклиматические, микроклиматические и почвенные условия в приморской полосе Южного берега Крыма. Теоретические основы и практические рекомендации для рационального размещения растений при реконструкции насаждений // Сборник научных трудов Государственного Никитского ботанического сада. 2014. Т. 137. 88 с.; Адамень Ф.Ф., Плугатарь Ю.В., Сташкина А.Ф. Наука и опытное дело как основа развития аграрного производства Крыма. Симферополь: АРИАЛ, 2015. 252 с.; Добровольская А.А., Родионова Г.Б., Воронков А.С., Ковалева Л.В. Спорофитно‐гаметофитные взаимодействия в системе пыльник‐мужской гаметофит у петунии // Физиология растений. 2009. Т. 56. N 3. С. 437‐444.; Batygina T.B., Vasilyeva V.E. Periodization in the development of flowering plant reproductive structures: critical periods // Acta Biologica Cracoviensia. Series Botanica. 2003. V. 45. N 1. P. 27‐36.; Pacini E., Jacquard C., Clément C. Pollen vacuoles and their significance // Planta. 2011. T. 234. N 2. P. 217‐227. DOI:10.1007/s00425‐011‐1462‐4; Губанова Т.Б., Мазур Е.А. Морозостойкость некоторых вечнозеленых видов рода Berberis L., интродуцированных в Никитском ботаническом саду // Бюллетень Государственного Никитского ботанического сада. 2012. N 105. С. 87‐91.; Xiao W., Sheen J., Jang J.C. The role of hexokinase in plant sugar signal transduction and growth and development // Plant Molecular Biology. 2000. V. 44. P. 451‐461.; Марковская Е.Ф., Шибаева Т.Г. Низкотемпературные сенсоры у растений: гипотезы и предположения // Известия РАН. Серия Биологическая. 2017. N 2. С. 120‐128. DOI:10.7868/S000233291702014X; Ciereszko I. Regulatory roles of sugars in plant growth and development // Acta Societatis Botanicorum Poloniae. 2018. V. 87. N 2. P. 3583‐3596. DOI:10.5586/asbp.3583; Rolland F., Baena‐Gonzalezz E., Sheen J. Sugar sensing and signaling in plants: conserved and novel mechanisms // Annual Review of Plant Biology. 2006. V. 57. P. 675‐709. DOI:10.1146/annurev.arplant.57.032905.105441; Ramom M. Rolland F., Sheen J. Sugar sensing and signaling // American Society of Plant Biologists. 2008. N. 22. e0117. DOI:10.1199/tab.0117; Frenguelli G., Ferranti F., Tedeschini E., Andreutti R. Volume changes in the pollen grain of Corylus avellana L. (Corylaceae) during development // Grana. 1997. V. 36. N 5. P. 289‐292. DOI:10.1080/00173139709362619; Khodorova N.V., Boitel‐Conti M. The role of temperature in the growth and flowering of geophytes // Plants. 2013. N 2. P. 699‐711. DOI:10.3390/plants2040699; Robertson F.C., Skeffington A.W., Gardner M.J., Webb A.A.R. Interactions between circadian and hormonal signaling in plants // Plant Molecular Biology. 2008. V. 69. N 4. P. 419‐427. DOI:10.1007/s11103‐008‐9407‐4; Atamian H.S., Harmer S.L. Circadian regulation of hormone signaling and plant physiology // Plant Molecular Biology. 2016. N 91. P. 691‐702. DOI:10.1007/s11103‐016‐0477‐4; Halliday K.J., Salter M.G., Thingnaes E., Whitelam G.C. Phytochrome control of flowering is temperature sensitive and correlates with expression of the floral integrator FT // The Plant Journal. 2003. V. 33. N 5. P. 875‐885. DOI:10.1046/j.1365‐313X.2003.01674.x; https://ecodag.elpub.ru/ugro/article/view/2583
-
3Academic Journal
Πηγή: Вестник Томского государственного университета. Биология. 2022. № 58. С. 113-127
Θεματικοί όροι: микроспорогенез, овес посевной, мейоз, цитологический анализ, Центральная Якутия
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Σύνδεσμος πρόσβασης: https://vital.lib.tsu.ru/vital/access/manager/Repository/koha:000923375
-
4Academic Journal
Πηγή: Vestnik of Volga State University of Technology Series Forest. Ecology. Nature Management.
Θεματικοί όροι: интродукция, микроспорогенез, pollen grain, микрогаметогенез, introduction, microsporogenesis, мужской гаметофит, 15. Life on land, пыльцевое зерно, Picea, microgametogenesis, male gametophyte
-
5Academic Journal
-
6Academic Journal
Συγγραφείς: M. F. Sanamyan, Sh. U. Bobokhujaev, A. X. Makamov, S. G. Achilov, I. Y. Abdurakhmonov, М. Ф. Санамьян, Ш. У. Бобохужаев, А. Х. Макамов, С. Г. Ачилов, И. Ю. Абдурахмонов
Πηγή: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 20, № 5 (2016); 643-652 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 20, № 5 (2016); 643-652 ; 2500-3259
Θεματικοί όροι: SSR-маркеры, monosomic lines, microsporogenesis, SSR-markers, identification of chromosomes, моносомные линии, микроспорогенез
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/811/833; Abdurakhmonov I.Y., Buriev Z.T., Saha S., Pepper A.E., Musaev J.A., Almatov A., Shermatov S.E., Kushanov F.N., Mavlonov G., Reddy U.K., Yu J.Z., Jenkins J.N., Kohel R.J., Abdukarimov A. Microsatellite markers associated with lint percentage trait in cotton, Gossypium hirsutum. Euphytica. 2007;156:141-156.; Blenda A., Fang D.D., Rami J.F., Garsmeur O., Luo F. A high density consensus genetic map of tetraploid cotton that integrates multiple component maps through molecular marker redundancy check. PLoS ONE. 2012;7(9):e45739. DOI 10.1371/journal.pone.0045739.; Brown M.S. The identification of chromosomes in Gossypium hirsutum by means of translocations. Genetics. 1965;52:430-431.; Brown M.S. The identification of the individual chromosomes of Gossypium hirsutum L. Proc. Beltw. Cotton Prod. Res. Conf. Dallas, January 9–11 1978. Dallas, 1978;70.; Brown M.S. Identification of the chromosomes of Gossypium hirsutumL. by means of translocations. J. Hered. 1980;71(4):266-274.; Brown M.S., Endrizzi J.E. The origin, fertility and transmission of monosomic in Gossypium. Amer. J. Bot. 1964;51(1):108-115.; Edwards G.A., Brown M.S., Niles G.A., Naqi S.A. Monosomics of cotton. Crop Sci. 1980a;20(4):527-528.; Edwards G.A., Brown M.S., Niles G.A., Naqi S.A. The frequency of spontaneous and other monosomes at Beasley laboratory, 1946 to 1979. Proc. Beltw. Cotton Prod. Res. Conf., 1980b;103-106.; Endrizzi J.E. Use of haploids in Gossypium barbadense L. as a source of aneuploids. Current Science. 1966;(2):34-35.; Endrizzi J.E., Brown M.S. Identification of monosomes for six chromosomes in Gossypium hirsutum. Amer. J. Botany. 1964;51:117-120.; Endrizzi J.E., Ramsay G. Monosomes and telosomes for 18 of the 26 chromosomes of Gossypium hirsutum. Can. J. Genet. Cytol. 1979;21(4):531-536.; Endrizzi J.E., Ramsay G. Identification of ten chromosome deficiencies of cotton. Cytological identification of eight chromosomes and genetic analysis of chromosome deficiencies and marker genes. J. Hered. 1980;71(1):45-48.; Endrizzi J.E., Ray D.T. Monosomic and monotelodisomic analysis of 34 mutant loci in cotton. J. Hered. 1991;82:53-57.; Endrizzi J.E., Ray D.T. Mapping of the cl1, R1, yg1 and Dw loci in the long arm of chromosome 16 of cotton. J. Hered. 1992;83:1-5.; Endrizzi J.E., Turcotte E.L., Kohel R.J. Genetics, cytology and evolution of Gossypium. Adv. Genet. 1985;23:271-375.; Galen D.F., Endrizzi J.E. Induction of monosomes and mutations in cotton by gamma irradiation of pollen. J. Hered. 1968;59(6): 343-346.; Hoffman S.M., Yu J.Z., Grum D.S., Xiao J., Kohel R.J., Pepper A.E. Identification of 700 new microsatellite loci from cotton (G. hirsutum L.). J. Cotton Science. 2007;11:208-241.; Kakani A., Saha S., Sapra V.T., Zipf A., Stelly D.M. Genetic mechanism and chromosomal location of pollen-specific gene (s) in Gossypium. Crop Sci. 1999;39:668-673.; Kohel R.J., Stelly D.M., Yu J. Tests of six cotton (Gossypium hirsutum L.) mutants for association with aneuploids. J. Hered. 2002; 93(2):130-132.; Lacape J.M., Jacobs J., Arioli T. A new interspecific, Gossipium hirsutum × G. barbadense, RIL population: Towards a unified consensus linkage map of tetraploid cotton. Theor. Appl. Cenet. 2009;119(2): 281-282. DOI 10.1007/s00122-009-1037-y.; Liu S., Saha S., Stelly D., Burr B., Cantrel R.G. The use of cotton aneuploid for the chromosomal assignment of microsatellite loci in cotton. J. Hered. 2000;91:326-332.; Musayev D.A. Geneticheskaya kollektsiya khlopchatnika [Genetic Сollection of Сotton]. Tashkent, FAN Publ., 1979. (in Russian); Myles E.L., Endrizzi J.E. Aneuploids induced by deficiencies of chromosome 9 and analysis of the time of nondisjunction in cotton. Genome. 1989;32:12-18.; Nguyen T.B., Ciband M., Brottier P., Risterucci A.M., Lacape J.M. Wide coverage of the tetraploid cotton genome using newly developed microsatellite markers. Theor. Appl. Genet. 2004;109:167-176. DOI 10.1007/s00122-004-1612-1.; Rakhmatullina E.M., Sanamyan M.F. Estimation of the efficiency of seed irradiation by thermal neutrons for inducing chromosomal aberrations in M1 of cotton Gossypium hirsutum. Genetika = Genetics (Moscow). 2007a;43(4):499-507. (in Russian); Rakhmatullina E.M., Sanamyan M.F. Estimation of the efficiency of seed irradiation by thermal neutrons for inducing chromosomal aberrations in M2 of cotton Gossypium hirsutum. Genetika = Genetics (Moscow). 2007b;43(5):639-646. (in Russian); Reddy A.S., Connell J., Pammi S., Iqbal J. Genetic mapping of cotton: isolation and polymorphism of microsatellites. Proc. Beltw. Cotton Prod. Res. Conf., Memphis, TN, National Cotton Council of America, 1998;485.; Saha S., Raska D.A., Stelly D.M. Upland cotton (Gossypium hirsutum L.) × Hawaiian cotton (G. tomentosum Nutt. ex Seem.) F1 hybrid hypoaneuploid chromosome substitution series. J. Cotton Science. 2006;10:263-272.; Saha S., Raska D.A., Stelly D.M., Manchali S., Gutierrez O.A. Hypoaneuploid chromosome substitution F1 hybrids of Gossypium hirsutum L. × G. mustelinum Miers ex Watt. J. Cotton Science. 2013;17: 102-114.; Saha S., Stelly D.M. Chromosomal location of Phosphoglucomutase 7 locus in Gossypium hirsutum. J. Hered. 1994;85:35-39.; Saha S., Stelly D.M., Makamov A.K., Ayubov M.S., Raska D., Guitierrez O.A., Manchali S., Jenkins J.N., Deng D., Abdurakhmonov I.Y. Molecular confirmation of Gossypium hirsutum chromosome substitution lines. Euphytica. 2015;205:459-473. DOI 10.1007/s10681-015- 1407-2.; Saha S., Wu J., Jenkins J.N., McCarty J.C., Jr., Gutierrez O.A., Stelly D.M., Percy R.G., Raska D.A. Effect of Chromosome substitutions from Gossypium barbadense L. 3-79 into G. hirsutum L. TM-1 on agronomic and fiber traits. J. Cotton Science. 2004;8:162-169. DOI 10.1007/s00122-012-1965-9.; Samora P.J., Stelly D.M., Kohel R.J. Localization and mapping of the Le1 and Gl2 loci of cotton (Gossypium hirsutum L.). J. Hered. 1994; 85(2):152-157.; Sanamyan M.F. Cytogenetic effect of treatment of cotton seeds with thermal neutrons. Tsitologiya i genetika = Cytology and Genetics. 2003a;3:49-54. (in Russian); Sanamyan M.F. Evaluation of the effect of pollen irradiation on karyotype variability in M1 cotton plants. Genetika = Genetics (Moscow). 2003b;39(7):947-955. (in Russian); Sanamyan M.F. Evaluation of the effect of pollen irradiation on karyotype variability in M2 cotton plants. Genetika = Genetics (Moscow). 2003c;39(8):1081-1090. (in Russian); Sanamyan M.F. Cytogenetic characterization of cotton haploid. Sbornik statey, posvyashchennyy 80-letiyu akademika A.A. Abdullaeva “Ғўzaning duneviy khilma-khilligi genofondi fundamental va amaliy tadkikotlar asosi” [Coll. The article is devoted to 80th anniversary of Acad. A.A. Abdullayev “Cotton in view of fundamental and applied studies of gene diversity in the world”]. Tashkent, 2010;121-124. (in Uzbek); Sanamyan M.F., Musayev D.A. Detection and cytological study of aneuploid and euploid plants with chromosome translocations in cotton Gossypium hirsutum L. Genetika = Genetics (Moscow). 1990;26(3):506-515. (in Russian); Sanamyan M.F., Petlyakova J.E., Musaev D.A. The development and a cytogenetic study of monosomics of Gossypium hirsutum L. Biologia Plantarum. 2000;43:193-197.; Sanamyan М.F., Petlyakova J., Rakhmatullina E.M., Sharipova E. Ch. 10. Cytogenetic collection of Uzbekistan. (Ed. I.Y. Abdurakhmonov) World Cotton Germplasm Resources. Croatia: InTech, 2014;247-287. DOI 10.5772/56978.; Sanamyan M.F., Petlyakova J.E., Sharipova E.A., Abdurakhmonov I.Y. Cytogenetic characteristics of new monosomic stocks of cotton (Gossypium hirsutum L.). Genetics Research International. 2011;12. http://dx.doi.org/10.4061/2011/273642.; Sears E.R. Misdivision of univalents in common wheat. Chromosoma. 1952;4:535-550.; Sears E.R. The aneuploids of common wheat. Research Bul. Univ. Missouri, College Agricul., Agricul. Exper. Station. 1954;(572): 1-58.; Stelly D.M. Localization of the Le2 locus of cotton (Gossypium hirsutum L.). J. Hered. 1990;81(3):193-197.; White T.G., Endrizzi J.R. Tests for the association of marker loci with chromosomes in Gossypium hirsutum L. by the use of aneuploids. Genetics. 1965;51:605-612.; Yu J.Z., Kohel R.J., Fang D.D., Cho J., Van Deynze A., Ulloa M., Hoffman S.M., Pepper A.E., Stelly D.M., Jenkins J.N., Saha S., Kumpatla S.P., Shah M.R., Hugie W.V., Percy R.G. A high- density simple sequence repeat and single nucleotide polymorphism genetic map of the tetraploid cotton genome. G3 (Bethesda). 2012;2:43-58. DOI 10.1534/g3.111.001552.; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/811
-
7Academic Journal
Συγγραφείς: O. A. Orlovskaya, I. N. Leonova, I. G. Adonina, E. A. Salina, L. V. Khotyleva, V. K. Shumny, О. А. Орловская, И. Н. Леонова, И. Г. Адонина, Е. А. Салина, Л. В. Хотылева, В. К. Шумный
Συνεισφορές: Белорусский республиканский фонд фундаментальных исследований, Российский фонд фундаментальных исследований, НАН Беларуси и СО РАН
Πηγή: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 19, № 5 (2015); 552-560 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 19, № 5 (2015); 552-560 ; 2500-3259
Θεματικοί όροι: генотипирование, triticale (×Triticosecale Wittmack), tetraploid wheat species T. durum, T. dicoccum, genome-substitution forms of common wheat Аvrolata (AABBUU), Аvrodes (AABBSS) and Аvrotica (AABBMt Mt ), introgression wheat and triticale lines, microsporogenesis, genotyping, тритикале (×Triticosecale Wittmack), тетраплоидные виды пшеницы T. durum, геномно-замещенные формы мягкой пшеницы Авролата (AABBUU), Авродес (AABBSS) и Авротика (AABBMt Mt ), интрогрессивные линии пшеницы и тритикале, микроспорогенез
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/448/525; Адонина И.Г., Орловская О.А., Терещенко О.Ю., Корень Л.В., Хотылева Л.В., Шумный В.К., Салина Е.А. Формирование хозяйственно ценных признаков у линий гексаплоидных тритикале с интрогрессиями от дикорастущих видов эгилопсов в зависимости от геномного состава. Генетика. 2011;47(4):516-526.; Жиров Е.Г. Геном пшеницы: исследование и перестройка: Автореф. дис. … д-ра биол. наук. Киев, 1990.; Леонова И.Н., Бадаева Е.Д., Орловская О.А., Родер М.С., Хотылева Л.В., Салина Е.А., Шумный В.К. Сравнительная характеристика гибридных линий Triticum aestivum/Triticum durum и Triticum aestivum/Triticum dicoccum по геномному составу и устойчивости к грибным болезням в различных экологических условиях. Генетика. 2013;49(11):1276-1283.; Леонова И.Н., Добровольская О.Б., Каминская Л.Н., Адонина И.Г., Корень Л.В., Хотылева Л.В., Салина Е.А. Молекулярный анализ линий тритикале, содержащих различные системы Vrn генов, с помощью микросателлитных маркеров и гибридизации in situ. Генетика. 2005;41(9):1236-1243.; Леонова И.Н., Салина Е.А., Орловская О.А., Хотылева Л.В., Шумный В.К. Использование SSR-маркеров для характеристики гибридных линий мягкой пшеницы с генетическим материалом T. durum и T. dicoccum. Молекуляр. и прикл. генетика. 2014;18: 61-69.; Орловская О.А., Каминская Л.Н., Хотылева Л.В. Интрогрессия генетического материала эгилопса в геном гексаплоидных тритикале. Генетика. 2007;43(3):363-369.; Орловская О.А., Корень Л.В., Хотылева Л.В. Морфологический анализ гибридов пшеницы, созданных посредством отдаленной гибридизации в трибе Triticeae. Весці НАН Беларусі. Сер. біял. навук. 2011;3:29-33.; Ригин Б.В., Орлова И.Н. Пшенично-ржаные амфидиплоиды. Л.: Колос, 1977.; Adonina I.G., Orlovskaya O.A., Tereshchenko O.Yu., Koren L.V., Khotyleva L.V., Salina E.A. Introgression of Aegilops genetic material into the genome of hexaploid triticale and influence of genome structure on formation of economic-valuable traits. Plant genetics, genomics, and biotechnology: Proc. Intern. Conf. 7–10 June. Novosibirsk, 2010.; Adonina I.G., Orlovskaya O.A., Tereshchenko O.Yu., Koren L.V., Khotyleva L.V., Shumny V.K., Salina E.A. Development of commercially valuable traits in hexaploid Triticale lines with Aegilops introgressions as dependent on the genome composition. Rus. J. Genet. 2011;47(4):449-457. DOI:10.1134/S1022795411040028; Adonina I.G., Salina E.A., Pestsova E.G., Röder M.S. Transferability of wheat microsatellites to diploid Aegilops species and determination of chromosomal localizations of microsatellites in the S genome. Genome. 2005;48(6):959-970. DOI:10.1139/g05-072; Arseniuk E., Gruszecka D ., Tarkowski Cz. Analysis of Stagonospora nodorum blotch resistance in hybrids of triticale, wheat, rye, Aegilops spp., Agrotriticum sp., and Dasypyrum sp. Proc. 4th Int. Triticale Symp. Alberta, 26–31 July 1998;1:303-311.; Badaeva E.D., Dedkova O.S., Gay G., Pukhalskyi V.A., Zelenin A.V., Bernard S., Bernard M. Chromosomal rearrangements in wheat: their types and distribution. Genome. 2007;50(10):907-926. DOI:10.1139/G07-072; Badaeva E.D., Friebe B., Gill B.S. Genome differentiation in Aegilops. 1. Distribution of highly repetitive DNA sequence on chromosomes of diploid species. Genome. 1996;39(2):293-306.; Friebe B., Jiang J., Raupp W.J., McIntosh R.A., Gill B.S. Characterization of wheat-alien translocations conferring resistance to diseases and pests. Euphytica. 1996;91:59-87. DOI:10.1007/BF00035277; Ganal M.W., Röder M.S. Microsatellite and SNP markers in wheat breeding. Genomics Assisted Crop Improvement. Eds R.K. Varshney, R. Tuberosa. Springer, 2007;2:1-24.; Khotyleva L., Koren L., Orlovskaya O. Use of Triticeae tribe species for expanding and enriching genetic resources of Triticum aestivum. Proc. 8th Int. Wheat Conf. St. Petersburg, 1–4 June 2010.; Kuleung C., Baenziger P.S., Dweikat I. Transferability of SSR markers among wheat, rye, and triticale. Theor. Appl. Genet. 2004;108(6): 1147-1150. DOI:10.1007/s00122-003-1532-5; Lelley T., Larter E.N. Meiotic regulation in triticale: interaction of the rye genotype and specific wheat chromosomes on meiotic pairing in the hybrid. Can. J. Genet. Cytol. 1980;22(1):1-6.; Leonova I.N., Röder M.S., Nasyrova F. The application of wheat microsatellite markers for the detection of interspecific variation in tetraploid Aegilops species with C and U genomes. Cereal Res. Commun. 2009;37(3):335-343. DOI:10.1556/CRC.37.2009.3.2; Markova M., Vyskot B. New horizons of genomic in situ hybridization. Cytogenet. Genome Res. 2009;126(4):368-375. DOI:10.1159/000275796; McIntosh R.A., Yamazaki Y., Dubcovsky J., Rogers4 J., Morris C., Appels R., Xia X.C. Catalogue of Gene Symbols for Wheat. 2013. Available at: http://www.shigen.nig.ac.jp/wheat/komugi/genes/; Naranjo T., Lacadena J.R., Giraldez R. Interaction between wheat and rye genomes on homologous and homoeologous pairing. Z. Pflanzenzuchtung. 1979;82(4):289-305.; Nevo E. Triticum. Wild Crop Relatives: Genomic and Breeding Resources, Cereals. Ed. C. Kole. Berlin; Heidelberg: Springer-Verlag, 2011.; Peng J., Korol A.B., Fahima T., Röder M.S., Ronin Y.I., Li Y.C., Nevo E. Molecular genetic maps in wild emmer wheat, Triticum dicoccoides: genome-wide coverage, massive negative interference, and putative quasi-linkage. Genome Res. 2000;10(10):1509-1531. DOI:10.1101/gr.150300; Plaschke J., Ganal M.W., Röder M.S. Detection of genetic diversity in closely related bread wheat using microsatellite markers. Theor. Appl. Genet. 1995;91:1001-1007.; Rabinovich S.V. Importance of wheat-rye translocations for breeding modern cultivars of Triticum aestivum L. Euphytica. 1998;100: 323-340.; Raina S.N., Rani V. GISH technology in plant genome research. Methods Cell Sci. 2001;23(1-3):83-104. DOI:10.1023/A:1013197705523; Salina E.A., Lim Y.K., Badaeva E.D., Shcherban A.B., Adonina I.G., Amosova A.V., Samatadze T.E., Vatolina T.Yu., Zoshchuk S.A., Leitch A.R. Phylogenetic reconstruction of Aegilops section Sitopsis and the evolution of tandem repeats in the diploids and derived wheat polyploids. Genome. 2006;49(8):1023-1035. DOI:10.1139/g06-050; Schneider A., Linc G., Molnar-Lang M. Fluorescence in situ hybridization polymorphism using two repetitive DNA clones in different cultivars of wheat. Plant Breed. 2003;122(5):396-400. DOI:10.1046/j.1439-0523.2003.00891.x; Schneider A., Molnar I., Molnar-Lang M. Utilisation of Aegilops (goatgrass) species to widen the genetic diversity of cultivated wheat. Euphytica. 2008;163(1):1-19. DOI:10.1007/; Schubert I., Shi F., Fuchs J., Endo T.R. An efficient screening for terminal deletions and translocations of barley chromosomes added to common wheat. Plant J. 1998;14:489-495.; Sodkiewicz W., Strzembicka A., Apolinarska B. Chromosomal location in triticale of leaf rust resistance genes introduced from Triticum monococcum. Plant Breed. 2008;127(4):364-367. DOI:10.1111/j.1439-0523.2007.01485.x; Somers D.J., Isaac P., Edwards K. A high-density microsatellite consensus map for bread wheat (Triticum aestivum L.). Theor. Appl. Genet. 2004;109(6):1105-1114. DOI:10.1007/s00122-004-1740-7; Xie W., Nevo E. Wild emmer: genetic resources, gene mapping and potential for wheat improvement. Euphytica. 2008;164(3):603-614. DOI:10.1007/s10681-008-9703-8; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/448
-
8Academic Journal
Συγγραφείς: Седышева, Г., Мельник, С., Горбачева, Н.
Θεματικοί όροι: ЯБЛОНЯ, КОЛОННОВИДНОСТЬ, СЕЛЕКЦИЯ НА ПОЛИПЛОИДНОМ УРОВНЕ, МЕЙОЗ, МИКРОСПОРОГЕНЕЗ, СТАДИИ ДЕЛЕНИЯ, МИКРОСПОРЫ, ГАМЕТЫ, ПЫЛЬЦА
Περιγραφή αρχείου: text/html
-
9Academic Journal
Συγγραφείς: Носкова, Н., Романова, Л.
Θεματικοί όροι: ЛИСТВЕННИЦА СИБИРСКАЯ, СОСНА ОБЫКНОВЕННАЯ, КЛИМАТИЧЕСКИЕ ИЗМЕНЕНИЯ, МИКРОСПОРОГЕНЕЗ, МИКРОСПОРОЦИТЫ, МЕЙОТИЧЕСКИЕ ДЕЛЕНИЯ, ГЕНЕРАТИВНЫЕ ОРГАНЫ
Περιγραφή αρχείου: text/html
-
10Academic Journal
Συγγραφείς: Кузнецова, Т., Лапшин, Д.
Θεματικοί όροι: ОБЛЕПИХА КРУШИНОВИДНАЯ, ГИБРИДЫ, МИКРОСПОРОГЕНЕЗ, СУММА ПОЛОЖИТЕЛЬНЫХ ТЕМПЕРАТУР
Περιγραφή αρχείου: text/html
-
11Academic Journal
Συγγραφείς: Хромова, Л., Романовский, М.
Θεματικοί όροι: СОСНА, МИКРОСПОРОГЕНЕЗ, КЛЕТКИ МИКРОГАМЕТОФИТА
Περιγραφή αρχείου: text/html
-
12Academic Journal
Συγγραφείς: Сурсо, М.
Θεματικοί όροι: СОСНА, ЛИСТВЕННИЦА, МИКРОСПОРОЦИТЫ, МИКРОСПОРОГЕНЕЗ, МЕЙОЗ, МИКРОСПОРЫ, ПЫЛЬЦА
Περιγραφή αρχείου: text/html
-
13Academic Journal
Συγγραφείς: Дубровский, Максим, Папихин, Роман, Брюхина, Светлана
Θεματικοί όροι: МИКРОСПОРОГЕНЕЗ, МУЖСКОЙ ГАМЕТОФИТ, МЕЖРОДОВЫЕ ГИБРИДЫ
Περιγραφή αρχείου: text/html
-
14Academic Journal
Συγγραφείς: Боярских, Ирина, Куликова, Алена
Θεματικοί όροι: ЖИМОЛОСТЬ СИНЯЯ, ФЕРТИЛЬНОСТЬ ПЫЛЬЦЫ, МИКРОСПОРОГЕНЕЗ, МЕЙОЗ, МИКРОСПОРЫ, ВЕРЕТЕНО ДЕЛЕНИЯ, ТЕТРАДЫ, ХРОМОСОМЫ, АНОМАЛИИ МЕЙОЗА
Περιγραφή αρχείου: text/html
-
15Academic Journal
Συγγραφείς: Лапшин, Денис, Кузнецова, Тамара, Фефелов, Владимир
Θεματικοί όροι: ОБЛЕПИХА КРУШИНОВИДНАЯ, ГИБРИДЫ, МИКРОСПОРОГЕНЕЗ, СУММА ПОЛОЖИТЕЛЬНЫХ ТЕМПЕРАТУР
Περιγραφή αρχείου: text/html
-
16Academic Journal
Συγγραφείς: Яндовка, Людмила, Тарбаева, Вероника
Θεματικοί όροι: МИКРОСПОРОГЕНЕЗ, КРИТИЧЕСКИЕ ПЕРИОДЫ, C. VULGARIS, C. AVIUM
Περιγραφή αρχείου: text/html
-
17Academic Journal
Συγγραφείς: Калашник, Н. А.
Θεματικοί όροι: сельское хозяйство, лесоводство, ель сибирская, аномалии пыльцы, микроспорогенез, пыльцевые зерна, экологические условия, техногенное воздействие, загрязнение
Διαθεσιμότητα: http://dspace.bsu.edu.ru/handle/123456789/50909
-
18Academic Journal
Συγγραφείς: Усатов, А., Федоренко, Г., Тихонова, М., Гаврилова, В., Маркин, Н.
Θεματικοί όροι: ЦИТОПЛАЗМАТИЧЕСКАЯ МУЖСКАЯ СТЕРИЛЬНОСТЬ (ЦМС), МИКРОСПОРОГЕНЕЗ, ТАПЕТУМ, ИНБРЕДНЫЕ ЛИНИИ
Περιγραφή αρχείου: text/html
-
19Academic Journal
Συγγραφείς: Дубровский, Максим
Θεματικοί όροι: АВТОПОЛИПЛОИДИЯ, ТЕТРАПЛОИДНЫЙ АНАЛОГ СОРТА, МИКРОСПОРОГЕНЕЗ, МЕЙОЗ, НАРУШЕНИЯ КАРИОКИНЕЗА, ТЕТРАДОГЕНЕЗ
Περιγραφή αρχείου: text/html
-
20Academic Journal
Συγγραφείς: Седышева, Галина
Θεματικοί όροι: ЯБЛОНЯ, ДИПЛОИД, ТЕТРАПЛОИД, МИКРОСПОРОЦИТ, МЕЙОЗ, МИКРОСПОРОГЕНЕЗ, ПЫЛЬЦА
Περιγραφή αρχείου: text/html